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第一章 总论 1

一、绪言 1

二、生理学实验常用器械的使用方法 3

三、生理学实验常用溶液及其配制方法 8

四、生理学实验常用气体及其制取 12

五、生理学动物实验的基本操作技术 12

六、常用实验动物生理学指标常数 16

第二章 MS-2000多媒体生物信号记录分析系统使用说明 18

一、系统组成 18

二、系统的启动和退出 19

三、图形界面与系统状态 19

四、操作键的意义和使用 20

五、功能键的意义 21

六、程序结构与功能 22

第三章 各论 31

一、神经和肌肉 31

实验1 坐骨神经腓肠肌肉标本的制备 31

坐骨神经干标本的制备 31

实验2 阈刺激、阈上刺激和最大刺激 33

实验3 神经干动作电位观察 34

实验4 神经干兴奋性不应期的测定 36

实验5 神经干兴奋传导速度的测定 37

实验6 刺激频率与骨骼肌收缩形式的关系 39

实验7 肌电图描记 40

二、血液 42

实验8 血细胞比容测定 42

实验9 红细胞渗透脆性试验 43

实验10 红细胞沉降率试验 44

实验11 血液凝固 45

实验12 出血时测定 46

实验13 凝血时测定 47

实验14 ABO血型鉴定与交叉配血 48

三、循环 49

实验15 蛙心起搏点分析 49

实验16 期前收缩和代偿间隙 51

实验17 蛙心电图记录 52

实验18 蛙心容积导体实验 53

实验19 蛙肠系膜徽循环观察 54

实验20 蛙心室肌细胞动作电位 55

实验21 蛙心灌流 56

实验22 心音听诊 57

实验23 人体动脉血压的测定 58

实验24 人体心电图描记 59

实验25 心血管活动的神经体液调节 61

实验26 左心功能的测定 63

实验27 降压神经放电 65

四、呼吸 67

实验28 呼吸运动的调节和胸内负压的测定 67

实验29 膈神经放电(膈肌放电) 68

五、消化 69

实验30 消化道平滑肌的生理特性 69

实验31 胃肠运动的观察 71

实验32 胆汁分泌的调节 72

六、泌尿 73

实验33 尿生成的影响因素 73

七、内分泌 75

实验34 肾上腺摘除动物的观察 75

实验35 胰岛素引起的低血糖现象观察 76

八、神经 76

实验36 反射弧的分析 76

实验37 脊髓反射 77

实验38 大脑皮层运动区功能定位 78

实验39 去大脑僵直 79

实验40 大脑皮层诱发电位 81

实验41 破坏小脑动物的观察 82

九、感觉器官 83

实验42 视敏度测定 83

实验43 色盲检查 84

实验44 视野测定 84

实验45 盲点测定 85

实验46 视网膜电图的描记 86

实验47 瞳孔调节反射和瞳孔对光反射 86

实验48 声音的传导途径 87

实验49 耳蜗微音器电位 88

实验50 破坏动物一侧迷路的效应 89

第四章 生理学实验设计 91

一、选题 91

二、生理学实验设计的主要内容 92

三、生理学实验设计的注意事项 92

四、实验中应注意的问题 93

五、撰写实验报告应注意的问题 93

参考文献 94