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总论 3

一、绪言 3

二、RM6240微机生物信号采集处理系统介绍 4

三、生理学常用器械介绍 16

四、动物实验的基本操作技术 16

五、生理学常用溶液配制方法 26

实验分论 30

实验一 蟾蜍坐骨神经—腓肠肌标本制备 30

实验二 阈刺激、阈上刺激与最大刺激 32

实验三 肌肉的单收缩与强直收缩 35

实验四 神经干动作电位的引导 37

实验五 神经干兴奋传导速度的测定 39

实验六 神经兴奋不应期的测定 41

实验七 神经干、肌膜动作电位和骨骼肌收缩同步记录 44

实验八 血细胞比容的测定 46

实验九 红细胞渗透脆性实验 47

实验十 红细胞沉降率实验 48

实验十一 血液凝固 49

实验十二 出血时测定 51

实验十三 凝血时测定 52

实验十四 ABO血型鉴定 53

实验十五 蟾蜍心脏起搏点的分析 54

实验十六 期前收缩与代偿间歇 55

实验十七 影响心脏活动的体液因素（蛙心灌流） 57

实验十八 人体心音听诊 61

实验十九 人体动脉血压的测量 63

实验二十 人体心电图的描记 65

实验二十一 人体动脉脉搏描记 67

实验二十二 家兔动脉血压调节 68

实验二十三 家兔减压神经放电 70

实验二十四 人肺活量测定 71

实验二十五 家兔呼吸运动的调节 72

实验二十六 家兔胸膜腔内压的观察 74

实验二十七 家兔尿生成调节 75

实验二十八 反射弧的分析 77

实验二十九 破坏小脑动物的观察 78

实验三十 家兔大脑皮层运动区功能定位 79

实验三十一 去大脑僵直 81

实验三十二 人视觉功能测定 82

实验三十三 视野测定 84

实验三十四 瞳孔的调节反射和对光反射 85

实验三十五 声音传导的途径 86

实验三十六 破坏动物一侧迷路的效应 87

附录 设计性实验 88

参考文献 92